當研究凋亡相關蛋白（如 caspase-3）或細菌du su（如白喉du su A 鏈）時，傳統細胞表達系統常因蛋白毒性導致宿主死亡。體外蛋白表達技術通過無細胞環境規避了這一限制：在兔網織紅細胞裂解物中添加目標基因 mRNA，4 小時內即可獲得功能性毒性蛋白，且產率高達 0.5 mg/mL。2021 年斯坦福團隊利用此技術成功表達出全長 63 kDa 的 Bax 蛋白，并證實其在線粒體膜穿孔中的構象變化。該方案不只避免了細胞毒性問題，還通過 實時熒光監測（如 FITC 標記）量化了蛋白折疊效率，為靶向凋亡通路的抗cancer藥物篩選提供了新工具。線性化質粒經酚氯純化后（濃度≥0.5 μg/μL），適用于 ??T7 啟動子介導的體外蛋白表達??。內源蛋白表達檢測

體外蛋白表達正在革新現場快速檢測技術。以瘧疾診斷為例：將凍干的大腸桿菌裂解物、瘧原蟲 HRP2 基因 DNA 及顯色底物預裝在微流控芯片中，加入水樣后啟動 30 分鐘體外蛋白表達反應，生成的 HRP2 蛋白催化顯色劑變紅，靈敏度達 5 寄生蟲/μL（傳統試紙只 200/μL）。此方案在剛果金野外測試中顯示，陽性檢出率提升 40% 且無需冷鏈運輸。類似技術已擴展至COVID-19檢測——用患者鼻拭子 RNA 直接合成 Spike 蛋白，結合納米金抗體實現 1 小時確診。這種 “即測即表達”模式 將診斷成本降至 $0.5/次，成為資源匱乏地區的抗疫利器。大腸桿菌可溶蛋白表達檢測當體外蛋白表達效率不足時，需檢測模板完整性并優化啟動子強度。

無細胞蛋白表達技術（CFPS）的he xin組分包括細胞裂解物（如大腸桿菌、兔網織紅細胞或小麥胚芽提取物），其中含有核糖體、tRNA、氨酰-tRNA合成酶及轉錄/翻譯因子（如啟動/延伸/終止因子）。此外，系統需補充能量再生系統（如ATP、磷酸肌酸與肌酸激酶）以維持反應持續進行，以及底物（氨基酸、核苷酸）和輔因子（Mg2?、K?等）以支持蛋白質合成。例如，大腸桿菌S30提取物常通過敲除核酸酶和蛋白酶來提升蛋白穩定性。英國nuclera高通量微流控蛋白表達篩選系統可支持助力無細胞蛋白表達技術，如想更多關于該產品的信息，歡迎咨詢官方代理商上海曼博生物！

無細胞蛋白表達技術（CFPS）在毒性蛋白和膜蛋白的合成中展現出獨特優勢。傳統細胞系統難以表達具有細胞毒性的蛋白（如溶菌酶、限制性內切酶），而無細胞蛋白表達技術通過體外開放環境規避了宿主細胞存活限制，可高效合成活性毒蛋白，例如珀羅汀生物成功表達的BamHI內切酶，其Minimun活性濃度只需0.001μg/μL。此外，無細胞蛋白表達技術通過添加表面活性劑或脂質體模擬膜環境，實現了全長跨膜蛋白（如CLDN18.1）的可溶表達，純度達80%以上，為藥物靶點開發提供了關鍵工具。通過微型化??體外蛋白表達??系統，24小時內測試了50種激酶抑制劑的效價。

相較于傳統細胞表達系統，體外蛋白表達的he xin優勢在于：時間效率ge min性提升： 省略細胞培養與基因整合步驟，目標蛋白可在2-8小時內合成；開放體系可編程性： 直接添加非天然氨基酸、同位素標記底物或熒光基團，實現對產物化學性質的準確調控；毒性蛋白表達可行性： 無細胞環境避免毒性蛋白導致的宿主死亡，為凋亡因子等特殊分子研究提供可能；微型化兼容性： 反應體積可縮小至納升級，適配高通量篩選需求。這些特性使體外蛋白表達成為 功能蛋白快速驗證的推薦平臺，尤其在需平行測試多突變體的場景中具明顯優勢。從模板添加到獲得功能性體外表達蛋白只需6小時??，而HEK293系統需兩周。桿狀病毒蛋白表達行業動態

大腸桿菌裂解物添加含T7啟動子的線性DNA后，利用其??高密度核糖體??快速啟動蛋白表達。內源蛋白表達檢測

相較于原核表達體系，真核體外蛋白表達的he xin優勢在于具備部分翻譯后修飾能力，但 關鍵修飾途徑仍存在明顯局限。在缺乏內質網-高爾基體轉運機制的情況下，糖基化修飾通常終止于高甘露糖型（Man?GlcNAc?）階段，無法合成復雜雙觸角唾液酸化糖鏈。這一缺陷直接影響zhi liao性抗體的抗體依賴性細胞介導的細胞毒性（ADCC）效應。同時，裂解物中二硫鍵異構酶（PDI）與分子伴侶（如BiP）的活性不足，導致含多對二硫鍵的蛋白錯誤折疊率升高40%-60%。為克服此瓶頸，需在裂解物中外源性添加重組糖基轉移酶復合體（如GnT-I/GnT-II/FUT8）以重構修飾途徑，并通過優化氧化還原電勢（Eh=-230 mV至-280 mV）改善二硫鍵形成效率。體外蛋白表達的這些修飾缺陷是目前制約其應用于功能性糖蛋白生產的主要因素。內源蛋白表達檢測