然后再入固定液，但要注意防止組織損傷。要熟悉采集部位。要能準確的按解剖部位采集，如胰腺，一般取胰島較多的胰腺尾部；肺應取有細支氣管及帶有軟骨片的小支氣管部。如果實驗需進行多組織樣本的采集，采集順序應按照：消化，神經系統，皮膚，肌肉等的順序進行。選好組織塊的切面。熟悉某些組織成分安排，然后決定其切面的走向；如一長管狀以橫切面較好。切除不需要的部分。特別是組織周圍的脂肪等，應盡可能掉，否則給固定、脫水、浸蠟、切片等帶來一些不必要的問題。組織樣品的固定（1）固定的方法：①小塊組織固定法：從動物取下的小塊組織，立即置入液態固定劑（這是應用經常的方法）。②注射/灌注固定法：某些組織塊由于體積過大或固定液極難滲入內部或需要對整個臟器或整個動物進行固定，這時宜采用注射固定法，將固定液注入血管，經血管分支到達整個組織和全身，從而得到充分的固定。另，空腔組織比如肺，肺內含有空氣，固定液難以滲入，建議先做肺灌注，使得肺充盈滿固定液以后再進行保存，如果空腔中氣體沒有有效排出，后續可能影響固定效果（沒有灌注的肺組織會浮在液體表面不利于固定，切片以后也會看到很多的空泡）。③蒸汽固定法：比較細小而薄的標本。小鼠卵巢早衰POF模型。北京裸鼠動物模型構建

    實驗樣本分類實驗一般采取樣本有：血液樣本、組織樣本和細胞樣本。通常，組織樣本采集后，應立即用等滲溶液（PBS或生理鹽水）盡量把血液漂洗干凈（除非血液也是分析對象），用濾紙或紗布吸干，把樣本分切成幾分，每份的體積約2個黃豆大小，每份用一個管子裝。血液樣本的采集應根據不同實驗的要求，將會采取不同策略。血清樣本：全血中不加抗凝劑，血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黃色透明液體。（全血標本室溫放置2小時3000rpm/min離心15min）血漿樣本：全血中加抗凝劑，血液凝固后取出的含凝血因子的淡黃色透明液體。（可用EDTA或肝素作為抗凝劑，標本采集后30分鐘內于2-8℃，3000rpm/min離心15min）如果是做生化\ELISA等檢測可以考慮血漿和血清，根據獲得的樣本量可考慮分裝成100-500μl/管，可避免反復凍融造成的檢測誤差。生化：建議優先選擇血清，其次選擇肝素抗凝血漿；ELISA：建議優先選擇血清，其次選擇肝素或EDTA抗凝血漿；凝血實驗：只能選擇枸櫞酸鈉抗凝血漿；血常規：只能選擇EDTA抗凝全血；如果要收集其中的白細胞、血小板等建議用抗凝全血。如果要做流式建議用專門的流式用血液收集管，防止表面抗原的丟失，或者盡快安排就近檢測。樣本處理取樣完后。云南高脂高糖動物模型服務放血致失血性貧血小鼠模型。

    微波爐中融化后制成1％的瓊脂糖膠。取10μlpcr產物于加樣孔中，120v恒壓瓊脂糖電泳15min.用凝膠成像系統成像。圖4中a上方是gm20541條件性敲除鑒定結果，wt表示野生型對照，條帶大小為223bp；het表示雜合子，有兩個條帶223bp和358bp；sixko表示純合子，條帶大小為358bp。圖4中a下方是six3－cre鑒定結果。six3－cre大小為200bp。根據圖4中a的結果，顯示所采用的鑒定方法可對新生小鼠的基因型進行有效鑒定。其中，gm20541基因敲除純合子小鼠即可作為視網膜色素變性疾病模型(后文用sixko或cko表示gm20541基因敲除純合子小鼠；ctr是指野生型；het是指雜合子)，并進行相關表型的驗證。(5)rt-pcr實驗分析six3-cre敲除小鼠視網膜中基因敲除效率驗證，方法如下：(a)分別分離野生型和突變型小鼠視網膜組織，置于，加入1mltrizol提取液，室溫20分鐘；(b)加入200μl氯仿，充分混勻，室溫靜置10分鐘；(c)將樣品置于4度離心機，10000轉離心15分鐘；(d)小心吸取上清液，加入等體積異丙醇，充分混勻，10000轉離心沉淀rna；(e)75％乙醇清洗析出的總rna，離心再次沉淀，然后晾干加入depc水溶解；(f)提取的總rna用cdna合成試劑盒(invitrogen,waltham,ma,usa)合成cdna。

    代謝組學的研究對象大都是相對分子量在1000以內的小分子物質，因此常用的血液樣本在取樣后，應小心操作，防止溶血，盡快分離出血清，分置于溫環境下保存。由于用于病理實驗的動物組織采集相對其他樣品的采集，操作更繁瑣，在處理過程中許多細節容易忽略，造成數據不完美（甚至不能用）。因此接下來將重點介紹組織樣品采集的注意事項及其固定。組織樣品采集注意事項組織應新鮮，操作時間盡可能短，否則細胞發生死后變化、自融及現象。是動物心臟還在跳動時采集，樣本取出后在5分鐘以內置于固定液內，避免長時間暴露在空氣環境中。組織塊盡量小而薄。組織塊的厚度以不超過5mm為宜，較為理想的厚度為2mm左右，主要目的是使固定液迅速而均勻的滲入組織塊內部。勿使組織塊受擠壓。在采集過程中，應盡量選擇較為鋒利的手術器械，如手術刀片等，避免操作過程中擠壓挫傷標本。擠壓過的組織均不可用。固定液的量一般以組織塊大小的20倍為宜，組織能夠在容器內自由移動。盡量保持組織的原有形態。新鮮組織經固定后，或多或少產生收縮現象（如胃腸），為此可將組織展平，以盡可能維持原形。保持組織清潔。組織塊上如有血液、污物、粘液、食物、糞便等，可用生理鹽水沖洗。面神經受損而致面部表情肌群的運動功能障礙,對患者的心理和日常生活造成很大的影響。

    特發性肺纖維化（IPF）小鼠模型建立【方法】1、BALB/c小鼠麻醉，6-8周齡，體重20~25g，仰臥固定于實驗臺上，頸部去毛后酒精消毒，切開皮膚，逐層暴露氣管；2、將1mL注射器經兩氣管軟骨環間隙朝向心端刺入氣管，回抽無阻力；3、注入博萊霉素（約4~5mg/kg）再向氣管內注入～3次，使藥物在肺部分布均勻；4、以大鼠身體長軸為中心，正反快速旋轉鼠板1～2分鐘。縫合皮膚，局部聚維酮碘消毒(或用青霉素消毒)防止，室溫保持在24～25℃，待動物自然清醒后置籠內常規飼養。肺纖維化模型發展時間：2周可見肺系數(肺重/體重×100％)、羥脯氨酸含量明顯升高。顯微鏡下可見炎癥細胞浸潤，以淋巴細胞、單核吞噬細胞為主，并有肺泡壁增厚、成纖維細胞增生等Ⅱ級肺泡炎表現。4周可見肺間質內有大量散在綠染的膠原纖維，肺泡結構破壞，見有許多纖維細胞等Ⅲ級肺間質纖維化病變。大鼠模型病理組織學與病理生理學改變與人類肺間質纖維化相似。其病變早期表現為滲出性肺泡炎，炎癥細胞在病變處聚集增多。晚期為肺間質纖維化，間質細胞增生，基質膠原聚集取代正常的肺組織結構。【檢測】組織病理切片HE染色。上面是我們已構建成功的動物模型，我們還可以根據客戶實驗方案構建其它模型，具體要求請咨詢。湖北皮下成瘤動物模型飼養

用血管內線栓阻斷法制備大鼠 MCAO模型。已被腦血管病研究者接受和采用。北京裸鼠動物模型構建

    應根據所檢測指標的要求，需采取不同策略處理。在如今分子生物學當道的現實背景下，動物實驗除了對實驗動物的體征及生理指標進行的監控外，各種分子檢測甚至是組學檢測也開始大行其道，動物實驗結束之后的機制研究成為了實驗的重頭戲。一般來說，動物實驗檢測對象主要包括：（1）體液中各類因子定性及定量檢測由于此類檢測對象多為蛋白及各類小分子物質，因此在取樣過程中應注意防止此類物質降解，在獲取后，應及時置于溫（≤-80℃）進行保存，在后續實驗過程中，也應當注意保存條件的穩定性，避免反復凍融。常用的方法便是酶聯免疫吸附測定（ELISA），除此之外，可利用生化分析儀及不同檢測方法的試劑盒（比色法、比濁法等）方法對各類生化指標及因子進行定性及定量檢測。（2）組織病理、生理變化及免疫組化檢測常用的病理檢測多使用H&E染色對細胞質及細胞核進行染色標記，以觀察細胞變化。除此之外，許多特殊染色也在病理生理變化中得到了應用，如利用Masson染色檢測組織纖維化病變，Nissl染色檢測神經元損傷，β-半乳糖甘酶染色檢測細胞衰老等。此外，還可以通過免疫組化技術對某些特異性標記物進行免疫顯色檢測，達到原位定性或定量檢測的目的。。北京裸鼠動物模型構建