細胞之間的促生長作用很小，也很難使細胞適應從體內的組織環境到被分散后進入生存環境的變化過程。如果接種的細胞密度過大，會導致營養物質供應不足，代謝廢物積累較快需要經常換液和傳代。2）適當增大原代培養接種的細胞密度，給培養的細胞提供更多的類似于在體內時細胞之間的相互作用，會極大提高原代培養的細胞在體外存活率。待細胞適應體外環境后進行傳代培養時再以較低的密度接種和培養。3）盡快使接種的細胞貼壁，是決定培養能否成功的關鍵?？梢栽诮臃N后先將培養瓶置培養箱內培養3h到5h，待細胞貼壁后，再補足培養液繼續培養。3、懸浮型原代細胞1）必須保持細胞的懸浮狀態?？梢酝ㄟ^增加培養液的黏度來幫助細胞呈懸浮狀態，如給培養液中加入低濃度的透明質酸復合物。在有攪拌裝置的培養器皿內加入培養液是，以5ml為限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快，否則即可使培養液溢出又容易造成污染。如果培養液的量在5ml以下，可以采用旋轉瓶培養。給懸浮培養的細胞換液時要注意不要吸出細胞。2）能夠進行懸浮培養的細胞，其生命力一般都比較旺盛，體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大，換液時間隔一般較短。本公司生產的SD大鼠心肌成纖維細胞采用混合酶消化、密度梯度離心制備而來。內蒙古小鼠原代細胞分離

    原代細胞的優勢與不足細胞培養很好的補充了體內實驗的不足，它讓細胞功能和進程的研究更具可操作性。細胞系的一個缺點是它們往往與原始的組織有不一樣的遺傳和表型。相比之下，原代細胞保持了細胞在體內的許多重要標志和功能。原代細胞的生長：雖然原代細胞有諸多優點，但是獲得高純度的原代細胞是一個非常艱巨的過程。比起細胞系，原代細胞可謂是極其敏感，需要額外添加經典培養基所沒有的營養。原代細胞要在專為每種細胞定制的特殊培養液中存活和生長。例如內皮細胞與上皮細胞或神經元營養需求就大為不同。因此需要特殊培養基。傳統細胞培養基靠血清提供生長因子、脂類和其他未知成分供細胞生長。但高血清會導致原代細胞分化或助長成纖維細胞等污染。此外，使用血清還會顧慮費用增高和批次差異等問題。使用低血清或無血清的特殊成分培養基不僅可以避開這些問題，還能更好的促進原代細胞的生長。另外，將原代細胞接種在生理親和性的基板上可以顯著提高細胞貼壁率、生長狀態和純度。基因表達分析：基因表達直接影響細胞功能，基因表達分析對研究原代細胞起重要作用。傳統的報告基因檢測和cDNA芯片方法往往需要轉染或大量高質量RNA。但是原代細胞是出了名的難轉染。湖南血液原代細胞構建請與我方溝通該組織的取材部分、要求、儲存及運輸條件，以方便原代細胞取材，保證實驗的順利進行。

    原代細胞培養之分離注意事項1、組織塊培養法1）組織塊接種后，在觀察和移動的過程中，注意不要引起液體的振蕩。要避免經常翻動和振動，否則組織塊不易附著于瓶壁上或附著后也會脫落飄起。2）加入的培養液不宜過多，避免浸泡的組織塊受輕微的波動而脫落下來。3）當細胞向外遷徙出來后要注意記錄并去除漂浮的組織塊和殘留的細胞，它們產生的有毒物質會影響原代細胞的生長。4）為促進組織塊盡快粘貼在培養瓶皿上，可以在種植前先將膠原薄層涂在培養瓶底壁上。2、貼壁型原代細胞1)原代培養的分離細胞在初次接觸體外環境時，它們之間會互相影響，在這些細胞之間能產生一些促生長的活性物質，使細胞彼此互相促進存活和生長。如果接種的細胞密度過低，細胞之間的促生長作用很小，也很難使細胞適應從體內的組織環境到被分散后進入生存環境的變化過程。如果接種的細胞密度過大，會導致營養物質供應不足，代謝廢物積累較快需要經常換液和傳代。2）適當增大原代培養接種的細胞密度，給培養的細胞提供更多的類似于在體內時細胞之間的相互作用，會極大提高原代培養的細胞在體外存活率。待細胞適應體外環境后進行傳代培養時再以較低的密度接種和培養。3）盡快使接種的細胞貼壁。

    原代細胞培養問題解答1、原代細胞與細胞系有什么區別？根據傳統定義，自組織收獲和接種的細胞被稱為原代細胞[Freshney,.(1987)..(NewYork,.)].這類細胞直接從組織分離，生命周期有限，經數次傳代后會逐漸停止生長。原代細胞在有限的生命周期內需掌握好細胞的生長空間，以保持細胞群中基因型和表型的一致性。細胞系是不斷生長、分化的細胞群，因其經過遺傳改造，致使其具有無限增長的潛能。體外生長的細胞系用于醫療或科研。但實際上，經過長時間、連續的傳代培養后，細胞系隨著代數的增加，細胞的基因型和表型都有可能發生改變。需要指出的是，在不同的科研小組中這些術語的定義會有所不同。許多研究員不用細胞系這個詞表示細胞群，除非細胞經過了遺傳改造。2、倍增和代數有什么區別？倍增是培養物中細胞總數的翻倍，通常是指細胞指數或對數生長期。代數是指細胞群從培養瓶中移出，傳代培養過程的次數，傳代培養的目的，是使細胞處于低密度以刺激其進一步生長。3、接收到的凍存細胞該如何處理？收到包裝箱后，立即將凍存細胞從干冰移入液氮中凍存。此過程盡量快，以避免升溫。不要將細胞儲存在-80℃，這樣會對細胞造成不可挽回的傷害。4、凍存的細胞該如何開始培養？。臍帶是哺乳類連接胎兒和胎盤的管狀結構。臍帶中通過尿膜的血管即臍動脈和臍靜脈。

    導語對于大部分科研人員來說，研究中一般用到均是現成的細胞系/株，我們只需要：進行細胞傳代和保種。然而，這些細胞系常常由于體外長期培養，而丟失原有生物學特性，對藥物處理的反應差距越來越大。因此，原代細胞的地位日漸凸顯，Paper中若有了原代細胞的數據都會添色不少。然而，就小編親生經歷，原代細胞分離著實是個技術活，結合自身經驗，為大家介紹：組織和正常組織的原代細胞的分離與培養方法。原代細胞的基本知識1.什么是原代細胞培養?原代細胞（Primarycells）：是指直接從機體取出的組織或細胞獲得單個細胞并在體外進行培養的細胞。這里的組織主要指：組織、外周血及胚胎等。原代細胞培養：由于原代細胞生長緩慢，繁殖一定的代數停止生長（一般10代以內）。所以一般認為：培養的原代的第1和傳代到第10代以內的細胞統稱為原代細胞培養。2.原代細胞與細胞系（celllines）的區別原代細胞和細胞系的比較：PrimarycellsCelllines增殖能力較弱強繁殖代數一般只能傳10代以內無限增殖，50代左右遺傳物質完整性遺傳物質未改變遺傳物質發生改變生物特性接近臨床樣本偏離臨床樣本培養容易程度比較復雜簡單。本公司分離的SD大鼠心肌細胞（乳鼠）取自新鮮的組織材料。湖南血液原代細胞構建

血管疾病發生和發展的一個主要因素是由于血管平滑肌細胞轉變成為了具有繁殖能力的表型。內蒙古小鼠原代細胞分離

    每15min搖晃一次，消化時間根據組織來定，約1-2h；5.待大部分組織塊消化成透明狀時，用40μm的細胞濾網過濾細胞，收集；6.用培養基重懸，置于培養箱培養。常見問題解答：Q：為什么我取得原代織，分離的卻不是細胞？A：取材時，我們要熟悉所需組織的類型和部位特征，選擇細胞集中、活力較好的部分。避免結締等正常組織。Q：若是細胞中混成纖維細胞，如何去除？A：成纖維細胞的去除對于細胞培養十分重要。由于成纖維細胞貼壁速度細胞快，可利用反復貼壁法使二者分離，進而達到成纖維細胞的目的。Q：為什么離心后，沒有細胞分離出來？A：需要考慮消化酶的因素，由于組織較致密，胰酶無法消化，一般選用膠原酶，如膠原酶Ⅳ。若是組織十分致密可以再結合機械法，如研磨或者攪拌加速細胞分散。如下表為二者的區別：膠原酶胰酶來源細菌胰臟消化組織纖維多的硬組織軟組織對細胞影響傷害小長時間有損傷作用力度緩和強注：膠原酶分為Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ型以及肝細胞膠原酶，根據分離的組織類型需選擇合適的膠原酶類型。Q：消化時間如何確定？A：具體的消化酶的量和消化時間可根據組織類型和多少進行調整。Q：消化之前為什么用EDTA?A：EDTA是一種非酶消化物，又稱螯合劑，對一些組織。內蒙古小鼠原代細胞分離