在體光纖成像記錄的優點及應用：低能量、無輻射、對信號檢測靈敏度高、實時監測標記的生物體內細胞活動和基因行為被較多應用于監控轉基因的表達、基因療于、染上的進展、壞掉的的生長和轉移、系統移植、毒理學、病毒染上和藥學研究中?？梢姽獬上竦闹饕秉c：二維平面成像、不能對的定量。具有標記的較多性，有關生命活動的小分子、小分子藥物、基因、配體、抗體等都可以被標記；對于淺部組織和深部組織都具有很高的靈敏度可獲得斷層及三維信息，實現較精確的定位。在體光纖成像記錄通過一次成像就可獲取整個圖像。南通腦立體定位單光纖成像技術方案

在體光纖成像記錄熒光素酶的每個催化反應只產生一個光 子 , 通常肉眼無法直接觀察到, 而且光子在強散射性的生物組織中傳輸時, 將會發生吸收、 散射、 反射、 透射等大量光學行為 。 因此，必須采用高 靈敏度的光學檢測儀器（ 如CCD camera）采集并定量檢測生物體內所發射的光子數量, 然后將其轉換成圖像， 在體生物發光成像中的發光光譜范圍通常為可見光到 近紅外光波段, 哺乳動物體內血紅蛋白主要吸收可見光, 水和脂質主要吸收紅外線, 但對波長為 590~1500nm的紅光至近紅外線吸收能力則較差， 因此, 大部分波長超過600nm的紅光, 經過散射、吸收后能夠穿透哺乳動物組織, 被生物體外的高靈敏光學檢測儀器探測到, 這是在體生物發光成像的理論基礎。南通腦立體定位單光纖成像技術方案在體光纖成像記錄的工作原理是將光源入射的光束經由光纖送入調制器。

在體光纖成像記錄與可見分光光度計相比，紫外可見分光光度計有什么不同？這兩個方面都可以區分，相信這一問題是困擾著許多剛接觸實驗儀器，但對這兩種儀器都沒有深入了解，沒有人去指導學習的朋友，儀器分析波長范圍不一樣。紫外線-可見光度計是在200-1000納米之間，其中紫外光譜是200-330納米，可見光譜為330-800納米，近紅外光譜為800-1000納米。儀器分析物質也不同，紫外光譜多分析有機物，可見光譜多分析無機物，當然也不完全是這樣，但有機物吸收敏感點大多在紫外光譜區，而無機物的吸收敏感點位于可見光譜區。

研制小動物三維在體光纖成像記錄，該成像設備以雙光子激發成像模態為中心，有機融合光片照明顯微成像模態，從細胞分子、結構圖譜和功能回路多個層面系統多方面地提供生物體的神經回路信息。圍繞小動物三維在體神經回路成像設備研制這一中心目標，將會涉及到成像設備、圖像算法、軟件平臺、驗證評價以及生物醫學應用等多方面研究。從生物體在體神經回路深層和快速的成像要求出發，研制有機融合多光子深層激發成像模態和光片照明快速掃描顯微成像模態于一體的小動物三維在體神經回路成像設備，研發適用于快速動態神經回路成像的影像信息處理與分析平臺，建立小動物三維在體神經回路成像設備的醫學生物驗證評價體系，開展小動物預臨床生物醫學應用研究，為小動物腦疾病模型在體神經回路的機理研究提供成像方法和工具。在體光纖成像記錄可以達到很高的分辨率。

在體光纖成像記錄系統在成像速度和分辨率方面還存很多不足。在成像系統的傳輸矩陣測試階段，必須采用SLM 實現相位調制，而SLM 器件的響應速度比較低，幀率只能達到幾百赫茲，一些特殊的器件可以達到20 kHz，但對于像素為100pixel×100pixel的成像區域進行逐點成像，成像速率只能達到2 frame/s，在實際應用中有很大的局限性。SLM 器件的光效率較低，體積較大，不利于系統集成和結構微型化。單光纖成像系統需要預先測定光纖的傳輸特性(即光纖傳輸矩陣)，而傳輸矩陣會受光纖形態(如彎曲、壓力和溫度)的影響。如果光纖在使用過程中受到外界的擾動，那么傳輸矩陣會發生變化，對成像產生較大影響。在體光纖成像記錄要求共聚焦系統具有較高的靈敏度。溫州鈣熒光神經元活動記錄技術

在體光纖成像記錄不需要掃描器件。南通腦立體定位單光纖成像技術方案

根據在體光纖成像記錄成像方式的不同, 在體生物發光成像主要有生物發光成像,和生物發光斷層成像兩種。其中,輸出是二維圖像, 即生物體外探測器上采集的光學信號，其原理簡單、 使用方便快捷, 適用于 定性分析及簡單的定量計算, 但無法獲得生物體內發光光源的深度信息, 難以實現光源的準確定位。 而成像系統則利用 多個生物體外探測器上采集的光學信號, 根據斷層成像的原理, 采用特定的 反演算法 ，得到活的物體小動物體 內發光光源的精確位置信息。目前, BLT的光源定位和生物組織光學特性參數的反演問題 已經成為國內外在體生物光學成像研究的重點和難點之一, 但還限于于實驗室研究階段, 沒有達到臨床實驗的階段, 所 以尚未有成熟的成像系統。南通腦立體定位單光纖成像技術方案

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