細胞基因藥物的基因遞送有病毒及非病毒兩種方式，其中病毒遞送更為常用。在病毒遞送路徑中，腺相關病毒（AAV）和慢病毒（Lentivirus）是常用的兩種載體；差別是病毒基因組的存在形式，AAV的基因組一般不整合到染色體中，以游離形式存在于染色體之外，且一般會表達數年之久；而慢病毒的基因組則會整合到染色體達到長期持續表達的目的。此外，其它用于基因藥物的病毒載體有單純皰疹病毒（HSV）、痘苗病毒（Vaccina Virus）、痘病毒（Poxviruses）。SAN HQ高鹽核酸酶是用Pichia pastoris表達的重組非特異性內切核酸酶。上海SAN HQ TF高鹽核酸酶70921-160

AAV病毒滴度通常分為物理滴度和infection滴度。物理滴度一般是指基因組滴度或者衣殼滴度。在測定AAV的含量時，通常采用基因組滴度或者衣殼滴度作為單位，其中基因組滴度為攜帶基因組的AAV的濃度，衣殼滴度為AAV物理顆粒的濃度?；蚪M滴度一般采用qPCR、ddPCR、染料法、UV/Vis等方法來測定；衣殼滴度主要是通過ELISA、HPLC等方法來測定。AAV基因組滴度檢測的關鍵在于盡可能徹底去除AAV衣殼外的HCD殘留，減少污染核酸對qPCR或ddPCR的影響。經典方法是加入常規核酸酶（如Dnase I、Benzonase等）消化AAV衣殼外的HCD殘留，然后加入Proteinase K破碎病毒衣殼，進行后續檢測。經過對比發現，用SAN HQ高鹽核酸酶替代常規核酸酶處理AAV病毒，能夠更高效去除衣殼外的核酸殘留，qPCR或ddPCR結果重復性更高、更穩定。山西高鹽核酸酶70921ArcticZymes于2005年在Olso證券交易所上市，精于規模化生產獨特特性的酶產品。

從細胞中釋放AAV載體的基本機械技術是反復冷凍/解凍，然后是低速離心步驟然而，但是這種技術很難放大生產。機械均質，如法式壓濾，是另一種裂解方法，在這種方法中，細胞膜在高壓剪切力作用下發生破裂。雖然這種方法是可放大的，但是由于剪切應力引起的聚集和沉淀，往往會導致產品損失。而化學裂解方式，例如Triton X-100在病毒載體純化過程有較高的總收率，而且易于放大。但是也有其局限性。研究表明，Triton X-100造成了一些急性口服毒性、眼睛損傷、皮膚刺激和慢性水生毒性。因此，該去垢劑在2016年被歐洲化學品管理局（European Chemicals Agency）被列為需要高度關注的物質。

通過三質粒瞬轉體系生產病毒載體，會引入宿主細胞DNA殘留（HCD）、蛋白殘留（HCP）、工藝雜質（如antibiotics、核酸酶等外源物質）等污染，存在潛在的致瘤性和免疫原性等風險。藥品監管機構一般允許生物制品中存在10ng/dose以下的殘留DNA。此外，根據雜質來源、工藝以及產品類型不同，也會對HCD限度做不同要求。為了達到這個要求，一般通過核酸酶處理和色譜聯用的方法。一般在細胞培養液裂解/收獲、澄清收獲及超濾濃縮等環節加入核酸酶處理，需要工藝摸索來確認處理方式。鑒于其在高鹽條件下的較高活性，SAN HQ高鹽核酸酶在不損失載體產量和活性的情況下改善了下游工藝。

經典的慢病毒載體（LV）的生產工藝如下，——三質粒系統瞬時轉染HEK293細胞系，轉染24小時后LV由轉染陽性細胞生產并排出到培養上清液中；收獲上清培養液后，加入核酸酶去除HCD污染，通過澄清步驟去除大的細胞碎片等雜質；下游純化步驟分離LV載體，純化方法包括切向流過濾TFF、色譜純化及超速離心；純化后的LV病毒顆粒經過無菌過濾，更換到優化后的配方中，灌裝并冷凍保存。每批Car-T生產時取對應量的LV病毒，切忌反復凍融，否則LV病毒會失活。致力于從深海微生物中識別新的冷適應酶，用于分子研究、體外診斷和制藥領域。四川ArcticZymes高鹽核酸酶70921

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離子交換層析 (IEC) 是一種簡單、通用且經濟高效的技術，已成為許多載體純化的關鍵步驟。IEC分為陰離子/陽離子交換柱，其中AEC（Anion-exchange chromatography）適用于AAV純化，是大規模AAV生產中去除空衣殼的主要手段。AAV衣殼亞種之間因表面電荷的差異導致不同的的等電點?？找職I在6.3左右，包裝了完整基因組DNA后的病毒顆粒PI大致為5.9。AAV與基質之間的靜電相互作用正是取決于衣殼的等電點(pI)和緩沖液的pH值?；谶@一原理在正電荷固定相上進行樣品的分離純化，去除雜質（如空衣殼和部分衣殼），并有效地回收目的載體。上海SAN HQ TF高鹽核酸酶70921-160