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來源: 發布時間:2023-06-14

相對定量實驗方法包括兩種重要方法:ΔΔCT Method:使用內參基因定量所研究樣品和參照樣品的目的基因。內參基因與目的基因可以同時反應,也可以單獨反應;雙標準曲線法:對每個樣品的內參基因和目的基因都做定量,求出每個樣品中內參基因和目的基因的數量,然后根據相對定量的基本公式來求出目的基因的差異表達。定量需要由標準曲線建立Ct值跟拷貝數之間的關系,標準曲線由標準品生成,標準品可以是已知濃度的RNA、質粒或合成的寡核苷酸鏈生成,定量未知模板時標準樣品和未知樣品必須同時反應。實時熒光定量PCR指在PCR反應體系加入熒光基團,熒光信號實時監測PCR,通過標準曲線對未知模板進行定量分析.珠海快速qPCR儀設置

PCR:Polymerase chain reaction. 是體外模擬生物的DNA 復制。需要DNA 聚合酶,DNA 模板,兩端引物,脫氧核苷酸dNTPs( dATP, ACTP, dGTP, dTTP),以及適當的緩沖體系。PCR 產物的增長形式為2N (如果各種試劑和外部所加條件均理想化,N 是循環數)。實際中,擴增效率不為100%。Real time PCR 是定量PCR 的一種,當然是在PCR 的基礎上發展出來的。(普通)PCR 包含很多因素,屬性,如:試劑,溫度,循環數,程序,PCR 產物(擴增子,amplicon)的量,擴增曲線(擴增子累積曲線),摻錯率,擴增子長度。一般來說,人們關心的是擴增子的量。而real time PCR 主要利用的是擴增曲線(amplification curve), 循環數;擴增子長度,擴增效率,擴增子多少,也加以考慮。珠海快速qPCR儀設置TaqMan方法通過采用熒光探針在PCR循環過程中隨著特定PCR產物的累計而對其進行檢測。

原理:在DNA擴增反應中,通過熒光化學物質測定每次PCR循環后產物總量。目的:實現定量而不止是定性分析。通過與內參基因進行對比,對樣品中的特定基因進行相對表達量的計算,以實現定量分析。qPCR的檢測方法有兩種,SYBRGreenl法和TaqMan探針法,下面介紹常用的SYBRGreenl法。原理:在PCR反應體系中,加入過量SYBR熒光染料,使其特異性地摻入DNA雙鏈后,發射熒光信號,而不摻入鏈中的SYBR染料分子不會發射任何熒光信號,從而保證熒光信號的增加與PCR產物的增加完全同步。試劑及儀器:Hieff®QpcrSYBR®GreenMasterMix試劑(翌圣)和ABI7500Real-TimeSystem實時熒光定量PCR儀進行qRT-PCR擴增。

雙雜交探針是兩個特異性探針,一個只5’端標記熒光基團,另一個只3’端標記猝滅基團。這兩個探針序列和模板特異性結合,結合的位置非常鄰近。在qPCR反應的退火階段,當兩個探針與模板結合時,位于兩個探針頭尾的熒光基團之間產生FRET現象,促進受體的熒光基團釋放一種波長的熒光信號,從而達到實時監控反應進程的目的。Amplifluor系統包括兩個特異性引物和一條檢測探針(UniPrimer),其中一條引物的5’末端帶有部分序列和UniPrimer的3’末端部分序列相同。UniPrimer兩端分別被熒光和淬滅基團標記且有發卡結構。反應時,UniPrimer結合到特異性引物擴增出的模板上作為引物進行PCR反應,在延伸的過程中UniPrimer發夾結構打開,熒光信號釋放。蝎形引物為莖環結構,其5’端帶有一個熒光基團FAM,3’端帶有一個淬滅基團DABCYL,其環的部分序列和模板完全互補配對。體系有模板時,莖環結構穩定,熒光和淬滅基團相距近,不能檢出熒光信號;體系無模板時,蝎形引物和模板特異性結合并起始PCR擴增,蝎形引物的環結構與擴增出的模板互補雜交,導致莖環結構被破壞,釋放出大量的熒光信號,熒光儀器可以實時收集這些熒光信號并生成相應的熒光擴增曲線。dPCR比qPCR準確度與精密度高。

交聯和裂解——穩定復合物并分離核組分:第一步對時間要求嚴格并且需要優化。體內共價交聯穩定蛋白質-DNA相互作用并于特定時間點進行分析。通常采用甲醛交聯,加入甘氨酸以終止反應。交聯劑滲透到完整細胞中并將蛋白質-DNA復合物鎖定在一起從而進行分析。交聯劑在整個過程中保持復合物穩定,但其作用必須是可逆的才能用于ChIP。一些非常穩定的蛋白質-DNA相互作用則不需要交聯。接下來,使用裂解液透化細胞膜,釋放細胞組分,然后蛋白質-DNA復合物變得可溶。去除細胞溶質蛋白以減少背景信號并增加靈敏度。注意:此時可以停止ChIP測定。 經過交聯,淬滅和洗滌細胞沉淀后,將裂解物于-80℃儲存。自聚合酶鏈式反應技術被發明以來,其簡單、可靠、快速、靈敏的質量,PCR是分子生物學中使用的技術。深圳酷博qPCR儀應用

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TaqMan 方法的優點:需要在探針和目標分子(靶點)之間發生特異性的水解(雜交),方可生成熒光信號。可使用明顯不同的報告基因染料標記探針,在一個反應管內擴增并檢測兩個不同的序列。無需PCR后處理,減少分析工作量并節省材料成本。TaqMan方法的缺點:TaqMan方法的主要缺點在于需要根據不同的序列,合成不同的探針。SYBR Green I染料試劑。一般將可與雙鏈DNA發生結合的小分子分為以下兩類:嵌入劑、小溝結合物。無論哪種結合方法,用于PCR實時檢測的DNA結合染料都需要滿足以下兩個條件:結合至雙鏈DNA時,會有增強的熒光對 PCR 不會產生抑制我們開發更加優化的條件,使得SYBR Green I染料的使用不會對PCR產生抑制并帶來相對于溴化乙錠更為靈敏的檢測。珠海快速qPCR儀設置

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