細胞凍存液的配置成分及比例: 細胞凍存液是含10%DMSO或甘油、10～20%小牛血清的凍存培養液。在凍存前比較好換一次培養液。 配置方法: 1、將DMSO和小牛血清加入培養液中,各自含量占總體積的10%; 2、然后用濾膜過濾配置好的細胞凍存液; 3、用**保存瓶分裝保存備用即可-15%（常見為10%）的DMSO或甘油，含10%-20%血清的凍存培養液。一般來講血清含量可以在10%-90%之間調整，凍存液中加入血清一方面可以為細胞提供營養，另一方面可以在細胞凍存過程中提供非滲透性保護物質，如蔗糖，白蛋白等從而更好地保護細胞。有人親測10%血清凍存細胞，結果證明是可以的，但高血清比例的凍存液更有助于提高細胞活力，此外嬌貴的細胞可以適當提高凍存液中血清的比例以保證獲得更高的存活率及活力。一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞。貴陽正規無血清細胞凍存液單價

凍存細胞注意事項：凍存細胞系以備將來之用時，必須遵守以下原則。我們建議您嚴格遵守您所用細胞系附帶的操作說明，以便獲得較佳結果。在細胞處于生長期密度達到70-90%的情況下進行培養細胞的凍存，并且細胞傳代盡可能靠前。確保凍存前活細胞百分比至少為90%。請注意較佳凍存條件取決于所用細胞系。細胞應緩慢冷凍，可使用可控制降溫速度的低溫冰箱或者低溫冷凍容器，使溫度每分鐘大約降低1°C。必須使用推薦的凍存培養基。凍存培養基中應含有DMSO或者甘油等冷凍保護劑。北京無血清細胞凍存液報價將要凍存的細胞懸液，進行細胞計數，計數后離心。

無血清細胞凍存液對比含血清細胞凍存液的優勢：傳統的細胞凍存液是使用培養基、血清和DMSO按照一定的比例混合，其中DMSO的含量是10%，血清的含量是10%，統稱為含血清細胞凍存液。含血清細胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法，如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘，然后移至-20℃冰箱30分鐘，再移至-80℃冰箱保存16-18個小時（或隔夜），較后才移至液氮罐中進行長期的儲存。（其中需要注意的是-20℃條件下不可超過1個小時，以防止冰晶過大，造成細胞大量的死亡。）

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：DMSO快速稀釋會對細胞造成滲透性損傷，使存活率下降50%。對于DMSO凍存的細胞，復蘇后應緩慢稀釋成細胞懸液：1）凍存液：培養基=1:1稀釋成細胞懸液后離心，然后重懸至培養皿中培養，隔天換液；2）凍存液：培養基=1:10稀釋成細胞懸液，不用離心，直接放置到培養瓶中培養2-4小時后，換液。上述兩種方法都是比較常用的細胞復蘇方法，后者更適用于原代細胞或比較難養的細胞。液氮內的細胞凍存較長時間不要超過半年，凍存在液氮中的細胞應一段時間內進行更替。一個細胞系在培養一個月后，可復蘇一管新的細胞確保其質量沒有發生太大變化，傳代幾次后，再凍存留種。無血清細胞凍存液：一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞。

凍存細胞復蘇方法：1.從冰箱里取出細胞冷凍保存管，立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2.待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1 ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合，再將細胞混合液從凍存管中移入含有9 ml該細胞培養基的試管中，混合均勻。3.離心收集培養細胞（參考離心條件：1,000~2,000 rpm，4℃，3~5 min），移去上清液。4.清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。5.加入適量的新鮮細胞培養基，使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后，將細胞混合液移至事先準備好的培養瓶中。6.鏡檢后，研究者可根據各自方法和需要來進行細胞培養。無血清細胞凍存液使用方法：選擇凍存處于對數生長期的細胞有助于提高復蘇細胞存活率。無血清細胞凍存液供應商

無血清細胞凍存液，通用于人和各種動物細胞株。貴陽正規無血清細胞凍存液單價

無血清細胞凍存液：產品介紹：無血清細胞凍存液是一款針對細胞凍存和復蘇所研發的即用型細胞凍存液。該凍存液采用獨特的凍存配方，包括DMSO在內的凍存保護劑復合物，**降低了細胞在凍存過程中冰晶對于細胞的損傷。凍存液中添加了葡萄糖，氨基酸等各種細胞營養成分，***提高了細胞的活力和復蘇率。無血清細胞凍存液不含牛血清，無任何動物源組分，可維持干細胞低分化狀態，并且可減少各類***和支原體污染的風險，確保細胞凍存安全。與傳統細胞凍存液相比，本產品重懸細胞后可直接凍存于-80℃，無需程序降溫。貴陽正規無血清細胞凍存液單價