鼠尾膠原是一種天然培養基，它具有促進體外培養細胞（特別是上皮細胞）貼壁的作用，同時它也是一種天然的黏附劑，當我們需要在培養瓶或培養皿內放置小玻片，制備細胞爬片時，可在瓶底涂一層膠原，再放上小玻片，自然干燥后小玻片就固定于培養瓶之中。通過本實驗可掌握鼠尾膠原的制備方法，以及如何切割小玻片，并利用鼠尾膠原將其固定于培養瓶內。實驗設備及材料：大鼠尾巴、剪刀、鑷子、止血鉗、彎頭吸管、平皿、三角燒瓶、燒杯、量筒、天平、生理鹽水、75%酒精、0.1%醋酸溶液、蓋玻片、培養瓶、鉆石筆、鼠尾膠原。實驗內容：1、制備鼠尾膠原。2、切割小玻片。3、利用鼠尾膠原將小玻片固定于培養瓶內。期間不斷攪拌，防止凍結成塊，得到膠原溶脹液。濟南鼠尾膠原推薦廠家

生物醫用鼠尾膠原蛋白的提取方法，采用酸法與酶法相結合的工藝，保持恒低溫無菌的環境，利用同樣濃度的鹽溶液進行兩次鹽析與離心，簡化了提純步驟。所用酸為低濃度酸溶液，并采用檸檬酸替代醋酸進行提純。從提取原料到樣品生成過程中，進行多次真空冷凍干燥，并經進一步處理獲得含水率在3％以下的膠原蛋白微粉；較后由滅菌、無菌包裝，成品膠原蛋白粉末的純度在98％以上。本發明獲得的膠原蛋白降低了蛋白的免疫原性，提高了產率和生物相容性，降低了成本，適用于生物醫用材料，所得到的膠原蛋白能完整地保留其特有的三股螺旋結構。蕪湖鼠尾膠原推薦廠家從包被表面除去多余的液體。過夜干燥。

鼠尾膠原、多聚賴氨酸和明膠3種基質對角膜上皮細胞增殖的影響：目的探討鼠尾膠原、多聚賴氨酸和明膠3種基質對體外培養角膜上皮細胞增殖的影響。方法采用鼠尾膠原、多聚賴氨酸和明膠作為基質包被培養器皿,以普通培養器皿作對照,培養角膜上皮細胞,觀察細胞形態,進行細胞計數并描繪細胞生長曲線,比較不同基質對角膜上皮細胞的增殖作用。結果使用基質包被的培養器皿培養角膜上皮細胞,細胞增殖速度較普通組快,細胞形態、活力和長勢比普通組更佳,促進增殖的能力為鼠尾膠原多聚賴氨酸明膠。結論鼠尾膠原可促進角膜上皮細胞增殖,且增殖效果優于多聚賴氨酸和明膠。論鼠尾膠原能促進毛細胞貼壁，涂布鼠尾膠原有利于膜片鉗實驗的長時程記錄，并且制作簡便，成本低廉。

含細胞三維膠原凝膠的制備（以配制1mg/mL三維膠1mL為例）準備好懸浮于培養液的細胞，并放置于冰浴中。將200μL本品加到12μL0.1mol/LNaOH中（如果反過來把12μL0.1mol/LNaOH加到膠原溶液中，會由于NaOH不能迅速混勻而產生局部的膠原凝結），立即混勻。再加入23μL10×PBS或10×培養液，混勻后立即加到培養器皿中（混勻后pH為7左右，如果PBS或培養液中沒有加酚紅，初次使用時需要測定pH值）。加入760μL的細胞懸浮液，混勻后立即加到培養器皿中。將培養器皿在室溫放置20min待膠凝固后，加入適當體積的細胞培養液，轉移到培養箱中培養。本品在室溫下pH中性時可迅速成膠，在操作過程中要盡量保持低溫。保存條件4℃保存，切勿凍存，有效期一年。鼠尾膠原醋酸溶解：在無菌條件下轉移上層的膠原溶液。

鼠尾膠原包被培養板：胎干細胞在體外可誘導分化為血管內皮細胞,進而形成血管,因而成為血管組織工程理想的種子細胞來源之一。目的:探討建立定向誘導人胚胎干細胞向血管內皮細胞分化的方法。方法:在小鼠胚胎成纖維細胞飼養層上培養人胚胎干細胞H1,將H1細胞團塊轉移到鼠尾膠原包被的培養板,貼壁24-48h后,培養基換為含不同輔助因子和內皮細胞生長添加劑的EGM-2內皮細胞培養基。結果與結論:①在EGM-2內皮細胞培養基誘導下,細胞逐步表達內皮細胞特異性標記基因VEGFR-2、PECAM1、vWF、CD34、VE-cadherin、GATA-2。②分化細胞表達內皮細胞特異性標記VE-cadherin、CD31。③分化細胞具有吞噬低密度脂蛋白功能。說明將人胚胎干細胞接種在鼠尾膠原包被培養板上,通過EGM-2內皮培養體系誘導,可直接分化為功能性血管內皮細胞。為研究胞外基質對誘導胚胎干細胞血管內皮細胞分化的作用以及相關信號分子機制打下了基礎。論鼠尾膠原能促進毛細胞貼壁，涂布鼠尾膠原有利于膜片鉗實驗的長時程記錄，并且制作簡便，成本低廉。利用鼠尾Ⅰ型膠原構建與人類自體骨組織化學成分和分子結構相近的仿生骨材料。濟南鼠尾膠原廠家

鼠尾I型膠原蛋白系采用方法在無菌下制備，純度達到95%以上。濟南鼠尾膠原推薦廠家

使用方法：1、細胞培養器皿的表面包被：以包被濃度為2μg/cm2為例，用無菌0.006mol/L乙酸將膠原蛋白稀釋到0.012mg/mL。加到相應的培養器皿中，確保膠原蛋白溶液鋪滿器皿的表面。開蓋在超凈臺上過夜晾干，也可以在室溫放置1小時后，用PBS洗3~4次后直接使用。包被好的器皿在4~25℃至少可保存三個月以上的時間。2、三維膠原凝膠的制備：A、無細胞三維膠原凝膠的制備（以配制1mg/mL三維膠1mL為例）將200μL本品加到置于冰浴的離心管中，加入690μL雙蒸水，然后加到12μL0.1mol/LNaOH中（如果反過來把12μL0.1mol/LNaOH加到膠原溶液中，會由于NaOH不能迅速混勻而產生局部的膠原凝結），立即混勻。再加入100μL10×PBS或10×培養液，混勻后立即加到培養器皿中（混勻后pH為7左右，如果PBS或培養液中沒有加酚紅，初次使用時需要測定pH值）。將培養器皿在室溫放置20min待膠凝固后，轉移到培養箱內。如果配制中使用的是10×PBS，使用前需要加入適當體積的細胞培養液預平衡。濟南鼠尾膠原推薦廠家